ChIA-PET

Kromatiinivuorovaikutusanalyysi paripään tunnistesekvensoinnilla (ChIA-PET)  on molekyylibiologinen menetelmä, jonka avulla voit määrittää genomissa huomattavan etäisyyden päässä toisistaan ​​olevien kromatiinialueiden vuorovaikutukset (tilallinen läheisyys) . [1] Tällaiset vuorovaikutukset ovat kiinnostavia sääntelyelementtien määrittämisen kannalta . Solujen säätelyelementit voivat sijaita huomattavan kaukana säädellyn geenin promoottorista (esimerkiksi cis-säätelyelementit , transsäätelyelementit , eristimet , tehostajat ). Tällaisten vuorovaikutusten mekanismien ymmärtämiseksi on tarpeen tuntea kromatiinialueiden spatiaalinen järjestely suhteessa toisiinsa, mikä tällä menetelmällä mahdollistaa de novo määrittämisen . Saadut tiedot ovat puolestaan ​​tärkeitä geeniekspression säätelymekanismien ymmärtämiselle . [2]

ChIA-PET perustuu ChIP :n , 3C:n ( Chromosome Conformation Determination ) ja Paired -end tag -sekvensoinnin käyttöön, joissa käytetään korkean suorituskyvyn sekvensointia ja tulosten jatkokäsittelyä tietokoneella. [3] 

Historia

Menetelmää käytettiin ensimmäisen kerran vuonna 2009 [1] ihmisen rintasyövän etäisten ER-alfan sitoutumiskohtien määrittämiseen. Myöhemmin sitä käytettiin esimerkiksi CTCF :n välittämän interaktomin (mahdollisten vuorovaikutusten kartta) rakentamiseen hiiren alkion kantasoluissa [4] .

Menetelmän mahdollisuudet

ChIA-PET yhdistää sekä ChIP- että 3C [5] -pohjaisten menetelmien ominaisuudet, mikä parantaa kummankin ominaisuuksia. Perinteisellä ChIP-menetelmällä voit määrittää tietyn proteiinin vuorovaikutuksen DNA :n kanssa ja sitä voidaan käyttää transkriptiotekijän sitoutumiskohtien etsimiseen . Käyttämällä ChIP-seq :a, mielenkiinnon kohteena olevan proteiinin de novo -sitoutumiskohdat voidaan määrittää koko genomissa. Jos proteiini sitoo kromatiinin alueita, jotka ovat kaukana toisistaan ​​kromosomissa , mutta lähellä avaruutta, ChIP-seq voi tunnistaa niistä jokaisen, mutta ei osoita niiden vuorovaikutusta. Kaikki ChIP-seq-menetelmällä määritetyt sekvenssit eivät kuitenkaan ole yksilöllisesti kartoitettu genomissa, eivätkä kaikki ole toiminnallisia sitoutumiskohtia [6] .

3C- ja ChIA-PET-menetelmät perustuvat proksimaalisen ligaation ( proximity  ligaation ) teoriaan, jonka mukaan proteiinikompleksiin liittyvien kromatiinialueiden lähellä olevat päät ligoidaan toisiinsa suuremmalla todennäköisyydellä kuin alueiden päät liuoksessa tai liittyvät toiseen proteiinikompleksiin.

3C-menetelmällä voidaan määrittää kromatiinin spatiaalinen rakenne, mutta se ei salli vuorovaikutuksessa olevan proteiinin määrittämistä [5] . Merkittävä ongelma on tarve saada tarkkaa tietoa vuorovaikutuksessa olevien lokusten järjestyksestä . Tämä on tarpeen alukkeiden valitsemiseksi kvantitatiiviseen tai puolikvantitatiiviseen PCR-analyysiin , jota käytetään niiden määrittämiseen. (Tulee huomata, että 3C-menetelmällä määritettyjä lokuksia - ehdokkaita vuorovaikutuksille - voi olla useita). ChIA-PET-menetelmä mahdollistaa tiettyyn proteiiniin liittyvän kromatiinin spatiaalisen rakenteen de novo -määrityksen. Eli toisaalta se ei vaadi tietoa DNA-sekvenssistä vuorovaikutuksen alueella, ja toisaalta se riippuu täysin käytettyjen vasta -aineiden spesifisyydestä .

Vertailevat ominaisuudet

Siru ChIP sek ChIA-PET 3C
Tarvitaan erityisiä vasta-aineita + + + -
On välttämätöntä tietää tutkitun lokuksen DNA-sekvenssi + - - +
Referenssigenomi vaaditaan - + + -
Menetelmä tarjoaa tietoa Sitovat sivustot Tietoja de novo -sidospaikoista
Tietoja de novo -sitoutumiskohdista +
kromatiinin konformaatiosta
Kromatiinin konformaatiot

Menetelmän kuvaus

Koemenetelmät

DNA-proteiinikompleksit silloitetaan epäspesifisesti formaldehydin kanssa. Näyte altistetaan ultraäänelle , kun taas DNA-molekyylit murskataan fragmenteiksi ja löyhästi sitoutuneet epäspesifiset kompleksit tuhoutuvat. Tämän seurauksena DNA-fragmentteja saadaan vahvoina komplekseina proteiinien kanssa. Lisäksi magneettihelmiin kiinnitettyjen spesifisten vasta-aineiden avulla kiinnostavaan proteiiniin liittyvät kromatiinifragmentit saostetaan. Usein tutkimuksen kohteina ovat tunnetut transkriptiotekijät [1] . Saostuneet kompleksit poistetaan liuoksesta magneettihelmillä käyttämällä magneettia. Eristetyt kompleksit jaetaan kahteen osaan ja DNA-molekyylien päihin "ommellaan" oligonukleotidipuolilinkkerit , joilla on tunnettu sekvenssi . Puolilinkkeri A on toisessa alikvootissa ja puolilinkkeri B on toisessa. Molemmat puolilinkkerit sisältävät MmeI-restriktioentsyymin tunnistaman kohdan ja eroavat toisistaan ​​kahden nukleotidin "viivakoodilla" : CG puoli- linkkeri A ja AT puolilinkkerille B. Tämän seurauksena linkkerit voidaan myöhemmin, sekvensoinnin aikana erottaa toisistaan ​​"viivakoodilla". Seuraavassa vaiheessa yhdistetään kaksi alikvoottia ja tapahtuu proksimaalinen ligaatio, jolloin puolilinkkerit ligoidaan toistensa päälle täyspitkien linkkereiden muodostamiseksi. Linkkerejä, joissa on AA (CG/CG) tai BB (AT/AT) "viivakoodit", pidetään todennäköisinä ligaatiotuotteina samassa kompleksissa, kun taas linkkerejä, joissa on AB (CG/AT) "viivakoodeja" pidetään kimeerisinä ligaatiotuotteina DNA : sta, joka liittyy erilaisiin proteiinikompleksit Sekvensoinnin valmisteluun kuuluu kompleksien prosessointi MmeI-restriktioentsyymillä [8] , joka pilkkoo DNA:n tietyn etäisyyden päässä tunnistuskohdasta puolilinkkerissä. Tämän seurauksena tämän vaiheen lopussa saadaan konstrukteja, jotka sisältävät parin "tunnisteita" ( eng. tag ) (kukin 20 bp) täyden linkkerin (38 bp) molemmilla puolilla. Tuloksena saadut fragmentit sekvensoidaan molemmista päistä ( PET ) . Tunnisteet kartoitetaan sitten genomiin. [7] [9]  

Tietokoneen käsittely

Sekvensointitulosten tietokonekäsittely sisältää 6 moduulia [7] [10]

Linkkisuodatus

Kaikki lukusekvenssit on jaettu sekvensseihin, joissa on luettavat "viivakoodit" ja ei-luettavat "viivakoodit". Jos "viivakoodia" ei voida lukea, sekvenssi "hylätään" käsittelystä. Jos "viivakoodi" voidaan lukea, sekvenssit kohdistetaan linkkereihin. Kaikki saadut sekvenssit on jaettu kimeerisiin (muodostettu ligaatiolla DNA:sta eri komplekseista ja jotka sisältävät A/B-linkkerin) ja ei-kimeerisiin (sisältävät A/A- tai B/B-linkkerin). On huomattava, että A/A:n tai B/B:n sisältävien sekvenssien joukossa voi esiintyä myös kimeerisiä. Lisäksi itse linkkereiden sekvenssit "hylätään" ja "merkkien" (PET) sekvenssit analysoidaan. [7] [10]

PET:ien kartoitus

Edellisessä vaiheessa saadut sekvenssit kartoitetaan referenssigenomiin. Ensimmäisessä vaiheessa eristetään 100-prosenttisesti kohdistettuja sekvenssejä , jotka voidaan kartoittaa yhteen lokukseen (ainutlaatuinen) tai useisiin lokuksiin. Jäljelle jäävistä sekvensseistä eristetään ne, jotka sisältävät 1 substituution sekvenssissä ( englanniksi  missmatch ) referenssigenomin kanssa, ne jaetaan myös uniikkeihin ja sekvensseihin, joissa on useita kartoituksia. Kaikki muut sekvenssit ovat kartoittamattomia. Kaikki sekvenssit paitsi yksilöllisesti kartoitetut sekvenssit "hylätään" käsittelystä. [7] [10]

PET:ien luokitus

PET:itä on kaksi ryhmää: "self-ligated" ( englanninkieliset  self- ligation PETs) ja "interligated" ( englanniksi  inter- ligation PETs ). "Self-ligated" ( englanniksi  self-ligation PETs ) vastaavat yhden ChIP-DNA-fragmentin päitä, niiden tulisi sijaita samassa kromosomissa lyhyen matkan päässä toisistaan, "head to tail" -suunnassa. "Interligoidut" ( eng.  inter- ligation PETs) jaetaan intrakromosomaalisiin (kartoitettu samaan kromosomiin suurelta etäisyydeltä), kromosomaalisiin (kartoitettu eri kromosomeihin) ja ligatoituihin eri orientaatioihin ( eng.  different orientation ligaation PETs ) (kartoitettu) samassa kromosomissa lyhyen matkan päässä, mutta väärässä suunnassa tai eri DNA-säikeissä). Raja, joka erottaa "itseligoidut" PET:t "interligoiduista" PET:istä, määräytyy luonnollisesti tietyllä "ääni"-intensiteetillä saatujen DNA-fragmenttien pituuden perusteella. Eri kokeissa se oli 3-4,6 Kb. [7] [10]

Proteiinia sitovien kohtien määritys

Itseligaatiotunnisteita ( itseligaatio-PET:itä ) käytetään proteiinien sitoutumiskohtien määrittämiseen .  Menettely on samanlainen kuin ChIP-seq :ssä .

Kromatiinivuorovaikutusten määritelmä

Tämän tyyppisen vuorovaikutuksen ennustamisessa käytetään "interligation" PET:itä . 

Tulosten visualisointi ja organisointi

Aiempien vaiheiden tiedot syötetään tietokantoihin tallennusta, käsittelyä ja mahdollista visualisointia varten.

Menetelmän haitat

  • Tässä menetelmässä signaali-kohinasuhde ei ole liian korkea. Tämä voi johtua epäspesifisistä proteiinikomplekseista, käytettyjen vasta-aineiden riittämättömästä spesifisyydestä, PCR:stä ennen sekvensointia ja sekvensointivirheistä. Kaikki nämä tekijät voivat aiheuttaa virheitä.
  • Toinen tärkeä kohta: tarve luopua suurten tietomäärien analysoinnista. Esimerkiksi toistoissa sijaitsevat ei-ainutlaatuiset PET:t, joissa voi myös olla toiminnallisia sitoutumiskohtia transkriptiotekijöille [11]
  • On mahdotonta määrittää, mikä kompleksin proteiineista, "istuu" säätelykohdassa, on vastuussa DNA-silmukan muodostumisesta. Tämä vaatii lisäkokeita, esimerkiksi 3C.
  • Spesifisiä vasta-aineita tarvitaan, lisäksi kompleksin proteiini voi olla suojattu ja saavuttamattomissa vasta-aineille, jolloin kompleksin sitoutumiskohtia ei määritetä.
  • Vertailugenomi vaaditaan.

Edut

  • Mahdollistaa de novo -määrityksen sekä kromatiinivuorovaikutuksista että proteiinien sitoutumiskohdista.
  • Ei vaadi tietoa DNA-sekvenssistä proteiinin sitoutumiskohdassa.
  • Mahdollisuus säätää menetelmän selektiivisyyttä valitsemalla spesifisiä vasta-aineita joko tietylle proteiinille (esimerkiksi spesifiselle transkriptiotekijälle) tai yleisesti käytetylle proteiinille (esimerkiksi yleisille transkriptiotekijöille).
  • Yhteensopiva tunnistepohjaisen NGS-sekvensoinnin kanssa [12] .

Tulosten analysointiin käytetty ohjelmisto [13]

ChIA-PET-kokeissa käytetään seuraavia tietokoneohjelmia

Katso myös

Muistiinpanot

  1. 1 2 3 Melissa J. Fullwood et ai. Estrogeenireseptoriin α-sidottu ihmisen kromatiiniinteraktomi arkistoitu 25. helmikuuta 2016 Wayback Machinessa . Luonto. 5. marraskuuta 2009; 462(7269): 58-64.
  2. Elzo de Wit ja Wouter de Laat 3C-teknologian vuosikymmen: näkemyksiä ydinorganisaatiosta . Gene Dev. 2012 1. tammikuuta; 26(1): 11-24.
  3. Melissa J. Fullwood ja Yijun Ruan ChIP-pohjaiset menetelmät pitkän kantaman kromatiinivuorovaikutusten tunnistamiseen Arkistoitu 26. toukokuuta 2021 Wayback Machinessa . J Cell Biochem. 2009 1. toukokuuta; 107(1): 30-39.
  4. Lucy Handoko et ai. CTCF-välitteinen toiminnallinen kromatiiniinteraktomi pluripotenteissa soluissa arkistoitu 25. toukokuuta 2021 Wayback Machinessa . Nat Genet. 19. kesäkuuta 2011; 43(7): 630-638.
  5. 1 2 Dekker J Kromosomikonformaation kaappaaminen Arkistoitu 15. lokakuuta 2017 Wayback Machinessa . Tiede. 2002 helmikuu 15;295(5558):1306-11.
  6. Johnson et ai., (2007). In vivo -proteiini-DNA-vuorovaikutusten genominlaajuinen kartoitus. Tiede. (316); 1497-502.
  7. 1 2 3 4 5 6 7 Arvostellut: Guoliang Li tn al. ChIA-PET-työkalu kattavaan kromatiinin vuorovaikutusanalyysiin ja paripäiden tunnisteiden sekvensointiin . Arkistoitu 25. toukokuuta 2021 Wayback Machinessa . Genome Biol. 2010; 11(2): R22.
  8. [1] Arkistoitu 12. kesäkuuta 2015 Wayback Machinessa
  9. Yufen Goh et ai. Kromatiinin vuorovaikutuksen analyysi paritetun pään merkkisekvensoinnilla (ChIA-PET) kromatiinivuorovaikutusten kartoittamiseksi ja transkription säätelyn ymmärtämiseksi .J Vis Exp. 2012; (62): 3770.
  10. 1 2 3 4 Stein L et al. Geneerinen genomiselain: malliorganismien järjestelmätietokannan rakennuspalikka Arkistoitu 11. toukokuuta 2016 Wayback Machinessa . Genome Res. 2002;12:1599-1610.
  11. Polak & Domany, Alu-elementit sisältävät monia sitoutumiskohtia transkriptiotekijöille, ja niillä voi olla rooli kehitysprosessien säätelyssä. Arkistoitu 25. toukokuuta 2021 Wayback Machineen . BMC Genomics. 2006, (7); 133
  12. Auttaneet Fullwood ja Ruan Whole Genome Chromatin Interaction Analysis with Paired-End Tags (ChIA-PET) Arkistoitu 26. joulukuuta 2010 Wayback Machinessa . 2010
  13. fi:ChIA-PET
  14. Monte Carlon menetelmä