Lon (proteaasi)

Lon (La-proteaasi) on seriiniproteaasi bakteerisoluissa, mitokondrioissa ja eukaryoottisissa kloroplasteissa. Kuuluu tärkeään ATP-riippuvaisten proteaasien ryhmään, johon kuuluvat myös proteasomit , ClpP , HslVU ja FtsH. MEROPS- luokituksen mukaan se kuuluu S16-perheeseen [1] .

Rakenne

Lon koostuu kolmesta domeenista - a) N-terminaalista, jonka toimintaa ei täysin tunneta, mutta joka ilmeisesti osallistuu substraattien tunnistamiseen [2] ; b) ATP-sitoutuminen, ATP -hydrolyysin suorittaminen , polypeptidiketjujen laskostaminen ja siirtäminen seuraavaan, c) proteaasidomeeni, jossa substraatti pilkotaan peptidifragmenteiksi [3] . Kuusi näistä proteiineista liittyy yhteen muodostaen lieriömäisen kuusijäsenisen heksameerin. Katkaisua varten polypeptidiketjun täytyy avautua sylinterin sisällä, jossa aktiivinen keskus on piilossa, mikä estää Lonia vaikuttamasta satunnaisiin soluproteiineihin, jotka eivät ole substraatteja. Sitä vastoin N-terminaalinen domeeni tunnistaa substraattiproteiinit ja siirtää ne aktiiviseen kohtaan proteiinin ATP:tä sitovien domeenien avulla [4] . On todisteita siitä, että kaksi kuusijäsenistä rengasta voivat liittyä yhteen muodostaen yhden suuren sylinterin. Lisäksi ne näyttävät liittyvän ATP:tä sitovilla ja N-terminaalisilla domeeneilla, mikä erottaa Lonin muista ryhmän jäsenistä, joissa yksittäiset polyjäseniset renkaat ovat yhteydessä proteaasidomeeneilla. Kuusijäsenisen oletetaan sitovan suuria proteiineja tai proteiinikomplekseja ja 12-jäsenisen pieniä peptidejä tai laskostumattomia proteiineja, mikä mahdollistaa proteolyysin säätelyn solussa [5] .

Toimintamekanismi

Lonin kiderakenne osoittaa, että aktiivinen keskus sisältää katalyyttisen dyadin Ser ja Lys (toisin kuin useimmat seriiniproteaasit, joissa kolmella aminohapolla Ser, Asp ja His on katalyyttinen rooli) [6] . Kokeellisten tietojen perusteella Lon ei ole spesifinen substraatin pilkkoutumiselle, ja se osoittaa vain lievää suosiota Leulle, Phe:lle ja Alalle asemassa -1 [7] .

Jakelu

Lonia esiintyy lähes kaikissa bakteereissa (harvinaisia ​​poikkeuksia lukuun ottamatta), mitokondrioissa ja eläinten ja kasvien kloroplasteissa . Jotkut bakteerit (esim . Bacillus subtilis ) sisältävät kahta tai useampaa Lon-muotoa, joilla on erilaiset toiminnalliset spesifisyydet [8] , [9] .

Substraatit. toiminnallinen arvo.

Escherichii colissa Lon suorittaa monia toimintoja. Lon on tärkein E. coli -proteaasi , joka tunnistaa ja hajottaa väärin laskostuneet tai aggregoituneet proteiinit [10] [11] . Kasvun myöhäisessä stationäärivaiheessa bakteerisolu alkaa hajottaa vapaita ribosomiproteiineja korvatakseen aminohappojen puutteen. Tämän toiminnon suorittaa myös Lon [12] . Kaksi tunnetuinta substraattia ovat SulA ja RcsA. SulA on solunjakautumisen estäjä , joka syntetisoituu vasteena solujen DNA-vaurioille. Lonin inaktivoituminen soluissa johtaa herkkyyteen ultraviolettivalolle - solut syntetisoivat SulA:ta, se ei tuhoudu, solut eivät jakautu, kasvavat pitkiksi filamenteiksi ja lopulta kuolevat [13] . RcsA aktivoi entsyymien transkription, jotka syntetisoivat kolaanihappoa , eksopolysakkaridia , joka muodostaa bakteerin suojaavan kapselin . Näin ollen näkyvin fenotyyppinen merkki Lonin puuttumisesta ovat limapesäkkeet petrimaljoilla [14] .

Lon tuhoaa UmuD- ja UmuC-proteiinit, jotka sallivat solun syntetisoida komplementaarisen DNA-juosteen vaurioituneeseen juosteeseen (joka tekee kuitenkin monia virheitä prosessissa). UmuD:ssä Lon tuhoaa inaktiivisen muodon, kun taas UmuD:n aktiivisen muodon tuhoaa ClpXP [15] . Lon hajottaa molemmat inkluusiokappaleiden tärkeimmät rakenneproteiinit , IbpA ja IbpB [16] ; oksidatiivisten stressivasteproteiinien SoxS ja MarA transkriptioaktivaattorit [ 17] ; sekä monet toksiini-antitoksiinijärjestelmien antitoksiiniproteiinit , mukaan lukien CcdA, PemI, PasA, RelB ja MazE [18] [19] . B. subtiliksessa on kaksi erilaista Lon-proteiinia: LonA ja LonB. LonA osallistuu itiöiden alkamiseen , kun taas LonB ilmentyy vain vasta muodostuneessa itiössä [ 9] [20] ; Myxococcus xanthusissa toinen tämän organismin kahdesta Lon-geenistä, LonD, osallistuu itiöinnin säätelyyn ja hedelmärungon muodostumiseen [21] ; Proteus mirabilisissa Lon säätelee liikkuvuutta [ 22] ; Salmonella entericassa , Pseudomonas syringaessa ja Yersinia pestisissä tyypin III eritysjärjestelmän komponenttien ilmentyminen, joita tarvitaan vuorovaikutukseen isäntäsolujen kanssa [23] [24] [25] . Eukaryoottisissa mitokondrioissa Lon sisältyy matriisiin , jossa se tuhoaa proteiineja , jotka ovat laskostuneet väärin tai joita reaktiiviset happilajit ovat vahingoittaneet . Sen merkittävimmät substraatit ovat akonitaasi, yksi sytokromioksidaasin alayksiköistä, ja StAR-proteiini (steroidogeeninen akuutti säätelyproteiini) [27] [28] [29] .

Spesifisyys

Lon tunnistaa lyhyitä sekvenssejä sekä substraattiproteiinien N- (UmuD) [30] että C-päässä (SulA) [31] . Niille ei kuitenkaan löytynyt yhteistä järjestystä. Väärinlaskostuneissa proteiineissa Lonin on raportoitu tunnistavan lyhyitä hydrofobisia alueita, joissa on runsaasti aromaattisia aminohappotähteitä [32] .

Asetus

Yhden lon - geenin transkription promoottorista E. colissa tunnistaa sigmatekijä σ32, joka on vastuussa lämpösokkiproteiinien transkriptiosta . Tämä on ilmeisen järkevää, koska Lon tunnistaa väärin laskostuneet proteiinit, jotka lisääntyvät dramaattisesti lämpösokissa [33] . Lon sitoutuu myös poly-P:hen, ortofosfaattipolymeeriin , joka on syntetisoitu E. coli -soluissa vasteena nälkään. Tämä muuttaa spesifisyyttä kohti vapaiden ribosomaalisten proteiinien tuhoamista, mikä mahdollistaa väliaikaisen selviytymisen aminohapponälkään [12] . T4-faagi syntetisoi PinA-proteiinia, joka spesifisesti estää Lonia. Tämä todennäköisesti viittaa siihen, että jotkin tälle faagille normaalitilassa tärkeistä proteiineista ovat Lonin substraatteja [34] .

Mielenkiintoisia faktoja

BL-21(DE3)-kanta, jota käytetään laajalti rekombinanttiproteiinien ilmentämiseen, on fenotyyppisesti Lon miinus, koska emo- E. coli B -kanta sisältää mutaation, joka inaktivoi Lonia. Tämän mutaation uskotaan lisäävän aggregaatiolle tai väärinlaskostumiselle alttiiden proteiinien saantoa [35] , [36] .

Jotkut Lonin tutkijat nisäkkäiden mitokondrioissa ehdottavat, että tämän proteiinin aktiivisuuden vähenemisellä voi olla merkittävä rooli ikääntymisprosessissa [37] .

Muistiinpanot

  1. Yhteenveto perheestä S16 Arkistoitu 4. maaliskuuta 2016 Wayback Machinessa - MEROPS
  2. Ebel et ai. J Bakteriol. 1999 huhtikuu;181(7):2236-43. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 29. tammikuuta 2016.
  3. Wickner et ai. Tiede. 1999 Dec 3;286(5446):1888-93. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 28. lokakuuta 2016.
  4. Park et ai. Mol-solut. 2006 Feb 28;21(1):129-34. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 12. lokakuuta 2013.
  5. Vieux et ai. Proc Natl Acad Sci US A. 2013 May 28;110(22):E2002-8. doi: 10.1073/pnas.1307066110. Epub 2013 toukokuu 14. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 5. toukokuuta 2017.
  6. Botos et ai. "Escherichia coli Lon -proteaasin katalyyttisellä domeenilla on ainutlaatuinen laskos ja Ser-Lys-dyadi aktiivisessa kohdassa". J Biol Chem. 2004 27. helmikuuta; 279 (9): 8140-8. PMID 14665623
  7. Peptidaasi S16.001:n substraatit: Lon-A-peptidaasi - MEROPS
  8. Riethdorf et ai. J Bakteriol. 1994 marraskuu;176(21):6518-27. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 12. lokakuuta 2013.
  9. 1 2 Schmidt et ai. J Bakteriol. 1994 marraskuu;176(21):6528-37. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 12. lokakuuta 2013.
  10. Shineberg ja Zipser J Bacteriol. 1973 joulukuu; 116(3):1469-71. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 12. lokakuuta 2013.
  11. Fredriksson et ai. J Bakteriol. 2005 Jun;187(12):4207-13. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 12. lokakuuta 2013.
  12. 1 2 Kuroda et ai. Tiede. 2001 heinäkuu 27;293(5530):705-8. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 30. tammikuuta 2016.
  13. Mizusawa ja Gottesman. Proc Natl Acad Sci US A. 1983 tammikuu;80(2):358-62. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 3. kesäkuuta 2016.
  14. Markovitz Proc Natl Acad Sci US A. 1964 Feb;51:239-46. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 12. lokakuuta 2013.
  15. Frank et ai. Proc Natl Acad Sci US A. 1996 Sep 17;93(19):10291-6. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 21. toukokuuta 2016.
  16. Bissonnette et ai. Mol Microbiol. 2010 maaliskuu;75(6):1539-49. doi: 10.1111/j.1365-2958.2010.07070.x. Epub 2010 10. helmikuuta . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 5. toukokuuta 2017.
  17. Griffith et ai. Mol Microbiol. 2004 maaliskuu;51(6):1801-16. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 12. lokakuuta 2013.
  18. Christensen et ai. RelE, globaali translaation estäjä, aktivoituu ravitsemusstressin aikana. Proc Natl Acad Sci USA . 2001 4. joulukuuta; 98 (25): 14328-33. PMID 11717402
  19. Christensen et ai. J "Toksiini-antitoksiinilokukset stressivasteen elementteinä: ChpAK/MazF ja ChpBK pilkkovat transloituneita RNA:ita ja tmRNA vastustaa niitä". Mol Biol. 2003 26. syyskuuta; 332 (4): 809-19. PMID 12972253
  20. Serrano et ai. J Bakteriol. 2001 toukokuu;183(10):2995-3003. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 12. lokakuuta 2013.
  21. Kroos ja Kaiser. "Monien kehityksellisesti säädeltyjen geenien ilmentyminen Myxococcusissa riippuu soluvuorovaikutusten sekvenssistä". Gene Dev. lokakuu 1987; 1 (8):840-54. PMID 2828174
  22. Claret ja Hughes. J Bakteriol. 2000 helmikuu;182(3):833-6. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 12. lokakuuta 2013.
  23. Takaya et ai. Mol Microbiol. 2005 helmikuu;55(3):839-52. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 20. toukokuuta 2016.
  24. Bretz et ai. "Lon-proteaasi toimii tyypin III proteiinin erityksen negatiivisena säätelijänä Pseudomonas syringaessa" Mol Microbiol. 2002 heinäkuu; 45 (2):397-409. PMID 12123452
  25. Jackson et ai. Mol Microbiol. 2004 joulukuu;54(5):1364-78. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 12. lokakuuta 2013.
  26. Granot et ai. Mol Endokrinol. 2007 Sep;21(9):2164-77. Epub 2007 kesäkuu 19. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 12. lokakuuta 2013.
  27. Fukuda et ai. solu. 2007 Apr 6;129(1):111-22. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 4. elokuuta 2018.
  28. Botha ja Davies. Nat Cell Biol. 2002 Sep;4(9):674-80. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 28. heinäkuuta 2016.
  29. Gonzalez et ai. Gene Dev. 1998 Dec 15;12(24):3889-99. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 12. lokakuuta 2013.
  30. Higashitani et ai. Mol Gen Genet. 1997 Apr 28;254(4):351-7. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 12. lokakuuta 2013.
  31. Gur ja Sauer Genes Dev. 2008 August 15;22(16):2267-77. doi: 10.1101/gad.1670908. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 7. huhtikuuta 2020.
  32. Gayda et ai. J Bakteriol. 1985 huhtikuu;162(1):271-5. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 10. huhtikuuta 2015.
  33. Hillard et ai. J Biol Chem. 1998 tammikuu 2;273(1):518-23. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 12. lokakuuta 2013.
  34. saiSree et ai. J Bakteriol. 2001 joulukuu;183(23):6943-6. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 12. lokakuuta 2013.
  35. E. colin genotyypit, BL-21 (DE3) . Käyttöpäivä: 6. lokakuuta 2013. Arkistoitu alkuperäisestä 12. lokakuuta 2013.
  36. Ngo ja Davies Ann NY Acad Sci. 2007 marraskuu;1119:78-87. . Haettu 3. lokakuuta 2017. Arkistoitu alkuperäisestä 12. lokakuuta 2013.