Proteiinit ( proteiinit , polypeptidit [1] ) ovat suurimolekyylisiä orgaanisia aineita , jotka koostuvat alfa- aminohapoista, jotka on liitetty ketjuun peptidisidoksella . Elävissä organismeissa proteiinien aminohappokoostumus määräytyy geneettisen koodin mukaan, useimmissa tapauksissa synteesissä käytetään 20 standardiaminohappoa . Monet niiden yhdistelmistä luovat proteiinimolekyylejä, joilla on laaja valikoima ominaisuuksia. Lisäksi proteiinin aminohappotähteet ovat usein alttiina translaation jälkeisille modifikaatioille , joita voi tapahtua sekä ennen kuin proteiini alkaa hoitaa tehtäväänsä, että sen "työskentelyn" aikana solussa. Usein elävissä organismeissa useat eri proteiinien molekyylit muodostavat monimutkaisia komplekseja, kuten fotosynteettisen kompleksin .
Proteiinien tehtävät elävien organismien soluissa ovat monimuotoisemmat kuin muiden biopolymeerien - polysakkaridien ja DNA :n - toiminnot . Siten entsyymiproteiinit katalysoivat biokemiallisten reaktioiden kulkua ja niillä on tärkeä rooli aineenvaihdunnassa. Joillakin proteiineilla on rakenteellinen tai mekaaninen toiminto, jolloin ne muodostavat sytoskeleton , joka säilyttää solujen muodon. Proteiineilla on myös keskeinen rooli solujen signalointijärjestelmissä , immuunivasteessa ja solusyklissä .
Proteiinit ovat tärkeä osa eläinten ja ihmisten ravintoa (päälähteet: liha, siipikarja, kala, maito, pähkinät, palkokasvit, viljat; vähemmässä määrin: vihannekset, hedelmät, marjat ja sienet), koska kaikki välttämättömät aminohapot ja osa on mukana proteiiniruokaa. Ruoansulatuksen aikana entsyymit hajottavat nautitut proteiinit aminohapoiksi, joita käytetään biosyntetisoimaan elimistön omia proteiineja tai hajotetaan edelleen energiaksi .
Ensimmäisen proteiinin, insuliinin , aminohapposekvenssin määrittäminen proteiinisekvensoinnilla toi Frederick Sangerille Nobelin kemian palkinnon vuonna 1958 . Max Perutz ja John Kendrew saivat ensimmäiset hemoglobiinin ja myoglobiiniproteiinien kolmiulotteiset rakenteet röntgendiffraktiolla 1950-luvun lopulla [ 2] [3] , josta he saivat Nobelin kemian palkinnon vuonna 1962 .
Italialainen Jacopo Bartolomeo Beccari sai proteiinia ensimmäisen kerran ( gluteenin muodossa ) vuonna 1728 vehnäjauhoista. Proteiinit tunnistettiin erilliseksi biologisten molekyylien luokkaksi 1700- luvulla ranskalaisen kemistin Antoine de Fourcroix'n ja muiden tutkijoiden työn tuloksena, jossa proteiinien ominaisuus koaguloitua ( denaturoitua ) lämmön tai happojen vaikutuksesta . huomautti . Proteiineja, kuten albumiinia ("munanvalkuaista"), fibriiniä ( veren proteiinia ) ja vehnänjyvistä peräisin olevaa gluteenia , tutkittiin tuolloin .
1800-luvun alussa saatiin jo jonkin verran tietoa proteiinien alkuainekoostumuksesta, tiedettiin, että aminohappoja muodostuu proteiinien hydrolyysin aikana . Jotkut näistä aminohapoista (esim . glysiini ja leusiini ) on jo karakterisoitu. Hollantilainen kemisti Gerrit Mulder oletti proteiinien kemiallisen koostumuksen analyysin perusteella, että lähes kaikilla proteiineilla on samanlainen empiirinen kaava . Vuonna 1836 Mulder ehdotti ensimmäistä mallia proteiinien kemiallisesta rakenteesta. Radikaaliteorian perusteella hän päätyi useiden selvennysten jälkeen siihen tulokseen, että proteiinin vähimmäisrakenneyksiköllä on seuraava koostumus: C 40 H 62 N 10 O 12 . Hän kutsui tätä yksikköä "proteiiniksi" (Pr) ( kreikan sanasta protos - ensimmäinen, primaarinen ) ja teoriaa - "proteiiniteoria" [4] . Itse termin "proteiini" ehdotti ruotsalainen kemisti Jacob Berzelius [5] . Mulderin ideoiden mukaan jokainen proteiini koostuu useista proteiiniyksiköistä, rikistä ja fosforista . Hän esimerkiksi ehdotti fibriinikaavan kirjoittamista muotoon 10PrSP. Mulder tutki myös proteiinien hajoamistuotteita - aminohappoja, ja yhdelle niistä ( leusiini ) määritti pienellä virhemarginaalilla molekyylipainon - 131 daltonia . Kun uutta tietoa proteiineista kertyi, proteiiniteoriaa alettiin arvostella, mutta siitä huolimatta sitä pidettiin yleisesti hyväksyttynä 1850-luvun lopulle asti.
1800-luvun loppuun mennessä suurin osa proteiinien muodostavista aminohapoista tutkittiin. 1880-luvun lopulla. Venäläinen tiedemies A. Ya. Danilevsky totesi peptidiryhmien (CO-NH) olemassaolon proteiinimolekyylissä [6] [7] . Vuonna 1894 saksalainen fysiologi Albrecht Kossel esitti teorian, jonka mukaan aminohapot ovat proteiinien päärakenneosia [8] . 1900-luvun alussa saksalainen kemisti Emil Fischer osoitti kokeellisesti, että proteiinit koostuvat aminohappotähteistä, jotka on yhdistetty peptidisidoksilla . Hän suoritti myös proteiinin aminohapposekvenssin ensimmäisen analyysin ja selitti proteolyysin ilmiön .
Proteiinien keskeinen rooli organismeissa tunnistettiin kuitenkin vasta vuonna 1926 , jolloin amerikkalainen kemisti James Sumner (myöhemmin Nobelin kemian palkinto) osoitti, että entsyymi ureaasi on proteiini [9] .
Puhtaiden proteiinien eristämisen vaikeus vaikeutti niiden tutkimista. Siksi ensimmäiset tutkimukset tehtiin käyttämällä niitä polypeptidejä, jotka voitiin helposti puhdistaa suuria määriä, eli veren proteiineja, kananmunia, erilaisia myrkkyjä ja teurastuksen jälkeen vapautuvia ruoansulatus-/aineenvaihduntaentsyymejä. 1950-luvun lopulla Armor Hot Dog Co. pystyi puhdistamaan kilon naudan haiman ribonukleaasi A :ta, josta on tullut kokeellinen kohde monissa tutkimuksissa.
William Astbury esitti vuonna 1933 ajatuksen siitä, että proteiinien sekundäärirakenne on seurausta vetysidosten muodostumisesta aminohappotähteiden välillä , mutta Linus Paulingia pidetään ensimmäisenä tiedemiehenä, joka pystyi ennustamaan proteiinien sekundaarirakenteen. Myöhemmin Walter Kauzman , tukeutuen Kai Linnerström-Langin työhön, vaikutti merkittävästi proteiinien tertiaarisen rakenteen muodostumislakien ja hydrofobisten vuorovaikutusten roolin ymmärtämiseen tässä prosessissa . Frederick Sanger kehitti 1940-luvun lopulla ja 1950-luvun alussa proteiinisekvensointimenetelmän , jolla hän määritti kahden insuliiniketjun aminohapposekvenssin vuoteen 1955 mennessä [10] [11] [12] , mikä osoitti, että proteiinit ovat aminohappojen lineaarisia polymeerejä, eikä haaroittuneita (kuten joissakin sokereissa ) ketjuja, kolloideja tai sykloleja . Ensimmäinen proteiini, jonka aminohapposekvenssin neuvosto/venäläiset tutkijat määrittelivät, oli aspartaattiaminotransferaasi vuonna 1972 [13] [14] .
Ensimmäiset röntgendiffraktiolla (röntgendiffraktiolla) saatujen proteiinien spatiaaliset rakenteet tulivat tunnetuksi 1950-luvun lopulla ja 1960-luvun alussa ja ydinmagneettisella resonanssilla löydetyt rakenteet 1980-luvulla. Vuonna 2012 Protein Data Bank sisälsi noin 87 000 proteiinirakennetta [15] .
2000-luvulla proteiinien tutkimus on siirtynyt laadullisesti uudelle tasolle, jolloin ei tutkita vain yksittäisiä puhdistettuja proteiineja, vaan myös yksittäisten solujen , kudosten suuren joukon proteiinien lukumäärän ja translaation jälkeisten modifikaatioiden samanaikaista muutosta. tai kokonaisia organismeja. Tätä biokemian aluetta kutsutaan proteomiikaksi . Bioinformatiikan menetelmien avulla tuli mahdolliseksi paitsi käsitellä röntgendiffraktiotietoja , myös ennustaa proteiinin rakennetta sen aminohapposekvenssin perusteella. Tällä hetkellä suurten proteiinikompleksien kryoelektronimikroskooppi ja proteiinidomeenien spatiaalisten rakenteiden ennustaminen tietokoneohjelmien avulla lähestyvät atomitarkkuutta [16] .
Proteiinin koko voidaan mitata aminohappotähteiden lukumääränä tai daltoneina ( molekyylipaino ), mutta molekyylin suhteellisen suuresta koosta johtuen proteiinin massa ilmaistaan johdetuissa yksiköissä - kilodaltoneissa (kDa). Hiivaproteiinit koostuvat keskimäärin 466 aminohappotähteestä ja niiden molekyylipaino on 53 kDa. Suurin tällä hetkellä tunnettu proteiini, titiini , on lihassarkomeerien komponentti ; sen eri muunnelmien (isoformien) molekyylipaino vaihtelee välillä 3000 - 3700 kDa. Ihmisen jalkapohjalihaksen titiini ( lat. soleus ) koostuu 38 138 aminohaposta [17] .
Proteiinien molekyylipainon määrittämiseen käytetään menetelmiä, kuten geelisuodatusta , polyakryyliamidigeelielektroforeesia , massaspektrometristä analyysiä , sedimentaatioanalyysiä ja muita [18] .
Proteiinit ovat amfoteerisia, eli niillä on olosuhteista riippuen sekä happamia että emäksisiä ominaisuuksia. Proteiinit sisältävät useita erilaisia kemiallisia ryhmiä, jotka pystyvät ionisoitumaan vesiliuoksessa: happamien aminohappojen sivuketjujen karboksyylijäännöksiä ( asparagiini- ja glutamiinihappo ) ja typpeä sisältäviä ryhmiä emäksisten aminohappojen sivuketjuissa (ensisijaisesti ε- lysiinin aminoryhmä ja amidiinitähde CNH (NH 2 ) arginiini , hieman vähemmässä määrin - histidiinin imidatsolitähde ) . Jokaiselle proteiinille on tunnusomaista isoelektrinen piste (pI) - alustan happamuus ( pH ), jossa tämän proteiinin molekyylien kokonaissähkövaraus on nolla ja vastaavasti ne eivät liiku sähkökentässä (esim . , elektroforeesin aikana ). Isoelektrisessä pisteessä proteiinin hydratoituminen ja liukoisuus ovat minimaalisia. pI-arvo riippuu happamien ja emäksisten aminohappotähteiden suhteesta proteiinissa: proteiineissa, joissa on monia happamia aminohappotähteitä, isoelektriset pisteet ovat happamalla alueella (tällaisia proteiineja kutsutaan happamiksi) ja proteiineissa, joissa on enemmän emäksisiä aminohappotähteitä. emäksisellä alueella (perusproteiinit). Tietyn proteiinin pI-arvo voi myös vaihdella riippuen ionivahvuudesta ja puskuriliuoksen tyypistä, jossa se sijaitsee, koska neutraalit suolat vaikuttavat proteiinin kemiallisten ryhmien ionisaatioasteeseen. Proteiinin pI voidaan määrittää esimerkiksi titrauskäyrästä tai isoelektrisellä fokusoinnilla [18] .
Yleensä proteiinin pI riippuu sen suorittamasta toiminnasta: useimpien proteiinien isoelektrinen piste selkärankaisten kudoksissa vaihtelee välillä 5,5 - 7,0, mutta joissakin tapauksissa arvot ovat äärimmäisillä alueilla: esimerkiksi pepsiinille , voimakkaasti happaman mahanesteen proteolyyttinen entsyymi pI ~ 1 [19] ja salmiinille lohenmaidon protamiiniproteiini , jonka ominaisuus on korkea arginiinipitoisuus, pI ~ 12. Proteiinit, jotka sitoutuvat nukleiinihappoihin johtuen sähköstaattinen vuorovaikutus fosfaattiryhmien kanssa ovat usein pääproteiineja. Esimerkkejä tällaisista proteiineista ovat histonit ja protamiinit.
LiukoisuusProteiinit eroavat toisistaan liukoisuusasteestaan veteen. Vesiliukoisia proteiineja kutsutaan albumiineiksi , ja niihin kuuluvat veren ja maitoproteiinit. Liukenemattomia eli skleroproteiineja ovat esimerkiksi keratiini (proteiini, josta muodostuu hiuksia, nisäkkäiden karvoja, lintujen höyheniä jne.) ja fibroiini , joka on osa silkkiä ja hämähäkinseittejä [20] . Proteiinin liukoisuutta määräävät paitsi sen rakenne, myös ulkoiset tekijät, kuten liuottimen luonne, ionivahvuus ja liuoksen pH [18] .
Proteiinit jaetaan myös hydrofiilisiin ja hydrofobisiin . Hydrofiilisiä ovat useimmat sytoplasman , ytimen ja solujen välisen aineen proteiineista , mukaan lukien liukenematon keratiini ja fibroiini . Suurin osa proteiineista, jotka muodostavat biologisia kalvoja , ovat hydrofobisia, eli integraalisia kalvoproteiineja, jotka ovat vuorovaikutuksessa hydrofobisten kalvolipidien kanssa [21] (näissä proteiineissa on yleensä myös hydrofiilisiä alueita).
DenaturaatioProteiinin denaturaatio viittaa mihin tahansa muutoksiin sen biologisessa aktiivisuudessa ja/tai fysikaalis-kemiallisissa ominaisuuksissa, jotka liittyvät kvaternaarisen , tertiaarisen tai sekundaarisen rakenteen menettämiseen (katso "Proteiinirakenne" -osa). Proteiinit ovat pääsääntöisesti melko stabiileja olosuhteissa (lämpötila, pH jne.), joissa ne normaalisti toimivat kehossa [9] . Jyrkkä muutos näissä olosuhteissa johtaa proteiinien denaturoitumiseen. Denaturoivan aineen laadusta riippuen erotetaan mekaaninen (voimakas sekoitus tai ravistelu), fyysinen (kuumennus, jäähdytys, säteilytys, sonikointi ) ja kemiallinen ( hapot ja emäkset , pinta -aktiiviset aineet , urea ) denaturointi [18] .
Proteiinien denaturaatio voi olla täydellistä tai osittaista, palautuvaa tai peruuttamatonta. Tunnetuin tapaus peruuttamattomasta proteiinidenaturaatiosta jokapäiväisessä elämässä on kananmunan keittäminen, kun korkean lämpötilan vaikutuksesta vesiliukoinen läpinäkyvä proteiini ovalbumiini muuttuu tiheäksi, liukenemattomaksi ja läpinäkymättömäksi. Denaturaatio on joissakin tapauksissa palautuva, kuten vesiliukoisten proteiinien saostamisessa ammoniumsuoloilla (suolausmenetelmä), ja tätä menetelmää käytetään niiden puhdistamiseen [22] .
Proteiinimolekyylit ovat lineaarisia polymeerejä , jotka koostuvat α-L-aminohappotähteistä (jotka ovat monomeereja ), ja proteiinit voivat sisältää myös modifioituja aminohappotähteitä ja ei-aminohappokomponentteja. Tieteellisessä kirjallisuudessa käytetään yhden tai kolmen kirjaimen lyhenteitä merkitsemään aminohappoja. Vaikka ensi silmäyksellä saattaa vaikuttaa siltä, että "vain" 20 aminohappotyypin käyttö useimmissa proteiineissa rajoittaa proteiinirakenteiden monimuotoisuutta, itse asiassa varianttien määrää tuskin voi yliarvioida: 5 aminohappotähteen ketjussa se on jo yli 3 miljoonaa, ja 100 aminohappotähteen ketju (pieni proteiini) voidaan esittää yli 10 130 muunnelmana. Ketjuja, joiden pituus vaihtelee 2:sta useisiin kymmeniin aminohappotähteisiin, kutsutaan usein peptideiksi , joilla on korkeampi polymerisaatioaste - proteiineja , vaikka tämä jako on hyvin ehdollinen.
Kun proteiini muodostuu, yhden aminohapon α-karboksyyliryhmän (-COOH) ja toisen aminohapon α-aminoryhmän (-NH2) vuorovaikutuksen seurauksena muodostuu peptidisidoksia . Proteiinin päitä kutsutaan N- ja C-päätteiksi riippuen siitä, kumpi terminaalisen aminohappotähteen ryhmistä on vapaa: -NH2 tai -COOH, vastaavasti. Proteiinisynteesissä ribosomissa ensimmäinen (N-terminaalinen) aminohappotähde on yleensä metioniinitähde , ja seuraavat tähteet kiinnittyvät edellisen C-päähän.
K. Lindström-Lang ehdotti erottamaan 4 proteiinien rakenteellisen organisoitumisen tasoa: primääri- , sekundaar- , tertiääri- ja kvaternaarirakenteet . Vaikka tämä jako on jokseenkin vanhentunut, sitä käytetään edelleen [4] . Polypeptidin primäärirakenne (aminohappotähteiden sekvenssi) määräytyy sen geenin ja geneettisen koodin rakenteen perusteella , kun taas korkeamman asteen rakenteet muodostuvat proteiinin laskostumisen aikana [23] . Vaikka proteiinin tilarakenne kokonaisuutena määräytyy sen aminohapposekvenssin perusteella, se on melko labiili ja saattaa riippua ulkoisista olosuhteista, joten on oikeampaa puhua edullisesta tai energeettisesti edullisimmasta proteiinikonformaatiosta [4] .
Ensisijainen rakenneEnsisijainen rakenne on aminohappotähteiden sekvenssi polypeptidiketjussa. Proteiinin primäärirakennetta kuvataan tavallisesti käyttämällä yksi- tai kolmekirjaimista aminohappotähteiden nimityksiä.
Primaarisen rakenteen tärkeitä piirteitä ovat konservatiiviset motiivit - aminohappotähteiden vakaat yhdistelmät, jotka suorittavat tietyn toiminnon ja joita löytyy monista proteiineista. Konservatiiviset motiivit säilyvät lajien evoluution aikana , ja niiden avulla on usein mahdollista ennustaa tuntemattoman proteiinin toiminta [24] . Eri organismien proteiinien aminohapposekvenssien homologia-asteen (samankaltaisuuden) mukaan voidaan arvioida evoluutioetäisyys taksonien välillä, joihin nämä organismit kuuluvat.
Proteiinin primäärirakenne voidaan määrittää proteiinin sekvensointimenetelmillä tai sen mRNA :n primäärirakenteesta käyttämällä geneettistä kooditaulukkoa.
Toissijainen rakenneToissijainen rakenne on polypeptidiketjun fragmentin paikallinen järjestys, joka on stabiloitu vetysidoksilla . Alla on yleisimmät proteiinien sekundaarirakenteen tyypit [23] :
Tertiäärinen rakenne - polypeptidiketjun spatiaalinen rakenne. Rakenteellisesti se koostuu erilaisten vuorovaikutusten stabiloimista toissijaisista rakenneelementeistä, joissa hydrofobisilla vuorovaikutuksilla on tärkeä rooli. Kolmannen tason rakenteen vakauttamiseen osallistu:
Proteiinin laskostumisen periaatteiden tutkimukset ovat osoittaneet, että on kätevää erottaa toinen taso toissijaisen rakenteen tason ja atomin tilarakenteen väliltä - laskosmotiivi (arkkitehtuuri, rakennemotiivi). Taittuva motiivi määräytyy toissijaisten rakenne-elementtien (α-heliksien ja β-juosteiden) keskinäisen sijoittumisen perusteella proteiinidomeenin sisällä , tiiviissä globulassa, joka voi esiintyä joko yksinään tai olla osa suurempaa proteiinia muiden domeenien kanssa. Ajatellaanpa esimerkiksi yhtä proteiinirakenteen tunnusomaista motiivia. Oikealla näkyvällä pallomaisella proteiinilla, trioosifosfaatti-isomeraasilla , on laskostumismotiivi, jota kutsutaan α/β-sylinteriksi: 8 yhdensuuntaista β-säikettä muodostavat β-sylinterin toisessa 8 α-kierteen sylinterissä. Tällainen motiivi löytyy noin 10 prosentista proteiineista [28] .
Taittuvien motiivien tiedetään olevan melko konservoituneita ja niitä esiintyy proteiineissa, joilla ei ole toiminnallisia tai evoluutiosuhteita. Taittuvien motiivien määritelmä on proteiinien fyysisen tai rationaalisen luokituksen (kuten CATH tai SCOP) taustalla [28] .
Proteiinin avaruudellisen rakenteen määrittämiseksi käytetään röntgendiffraktioanalyysimenetelmiä, ydinmagneettista resonanssia ja tiettyjä mikroskopiatyyppejä.
KvaternaarirakenneKvaternäärinen rakenne (tai alayksikkö, domeeni ) - useiden polypeptidiketjujen keskinäinen järjestely osana yhtä proteiinikompleksia. Proteiinimolekyylit, jotka muodostavat kvaternaarisen rakenteen omaavan proteiinin, muodostuvat erikseen ribosomeihin ja vasta synteesin päätyttyä muodostavat yhteisen supramolekyylirakenteen. Kvaternäärisen rakenteen omaava proteiini voi sisältää sekä identtisiä että erilaisia polypeptidiketjuja. Samantyyppiset vuorovaikutukset osallistuvat kvaternaarisen rakenteen stabiloitumiseen kuin tertiäärirakenteen stabilointiin. Supramolekulaariset proteiinikompleksit voivat koostua kymmenistä molekyyleistä.
Yleisen rakennetyypin mukaan proteiinit voidaan jakaa kolmeen ryhmään:
Peptidiketjujen lisäksi monet proteiinit sisältävät myös ei-aminohapporyhmiä, ja tämän kriteerin mukaan proteiinit jaetaan kahteen suureen ryhmään - yksinkertaisiin ja monimutkaisiin proteiineihin (proteiinit). Yksinkertaiset proteiinit koostuvat vain polypeptidiketjuista, monimutkaiset proteiinit sisältävät myös ei-aminohapporyhmiä eli proteettisia ryhmiä. Prosteettisten ryhmien kemiallisesta luonteesta riippuen monimutkaisten proteiinien joukossa erotetaan seuraavat luokat [20] :
Proteiinin fysikaaliset ominaisuudet solussa, kun otetaan huomioon vesikuori ja makromolekyylien ahtautuminenovat erittäin monimutkaisia. Röntgendiffraktioanalyysin tiedot osoittavat, että proteiini on järjestetty " kiteen kaltaiseksi järjestelmäksi" - "ajoittainen kide" [30] [31] . [32] , korkea pakkaustiheys [33] , denaturointiprosessin yhteisvaikutus [34] ja muita seikkoja [35] .
Toisen hypoteesin puolesta, proteiinien nestemäisistä ominaisuuksista intraglobulaaristen liikkeiden prosesseissa (rajoitetun hyppäämisen tai jatkuvan diffuusion malli ), neutronien sirontakokeet [36] , Mössbauer-spektroskopia [37] [38] todistavat .
Elävät organismit syntetisoivat proteiineja aminohapoista geeneihin koodatun tiedon perusteella . Jokainen proteiini koostuu ainutlaatuisesta aminohappotähteiden sekvenssistä, jonka määrää tätä proteiinia koodaavan geenin nukleotidisekvenssi. Geneettinen koodi on tapa kääntää DNA:n nukleotidisekvenssi (RNA:n kautta) polypeptidiketjun aminohapposekvenssiksi. Tämä koodi määrittää RNA:n kolmen nukleotidin osien, joita kutsutaan kodoneiksi , ja tiettyjen proteiiniin sisältyvien aminohappojen vastaavuuden: esimerkiksi AUG-nukleotidisekvenssi vastaa metioniinia . Koska DNA koostuu neljästä nukleotidityypistä , mahdollisten kodonien kokonaismäärä on 64; ja koska proteiineissa käytetään 20 aminohappoa, monet aminohapot on määritelty useammalla kuin yhdellä kodonilla. Kolme kodonia ovat merkityksettömiä: ne toimivat signaaleina polypeptidiketjun synteesin pysäyttämiseksi ja niitä kutsutaan terminaattorikodoneiksi tai lopetuskodoneiksi [39] .
Proteiinia koodaavat geenit transkriptoivat ensin lähetti-RNA:n ( mRNA ) nukleotidisekvenssiksi RNA - polymeraasientsyymit . Suurimmassa osassa tapauksia elävien organismien proteiinit syntetisoidaan ribosomeissa , solujen sytoplasmassa olevissa monikomponenttisissa molekyylikoneissa. Polypeptidiketjun synteesiprosessia mRNA-templaatissa olevan ribosomin toimesta kutsutaan translaatioksi [39] .
Ribosomaalinen proteiinisynteesi on pohjimmiltaan sama prokaryooteissa ja eukaryooteissa , mutta eroaa joissakin yksityiskohdissa. Siten ribosomit voivat lukea prokaryoottien mRNA:n proteiinien aminohapposekvenssiin välittömästi transkription jälkeen tai jopa ennen sen päättymistä [40] . Eukaryooteissa primaarisen transkriptin täytyy kuitenkin ensin käydä läpi useita modifikaatioita ja siirtyä sytoplasmaan (ribosomien sijaintiin) ennen kuin translaatio voi alkaa. Prokaryooteissa proteiinisynteesinopeus on korkeampi ja se voi saavuttaa 20 aminohappoa sekunnissa [41] .
Jo ennen translaation alkamista aminoasyyli-tRNA-syntetaasientsyymit kiinnittävät spesifisesti aminohappoja vastaavaan siirto-RNA : hansa (tRNA). tRNA:n osa, jota kutsutaan antikodoniksi, voi pariutua komplementaarisesti mRNA-kodonin kanssa, mikä varmistaa, että tRNA:han kiinnittynyt aminohappotähde sisältyy polypeptidiketjuun geneettisen koodin mukaisesti.
Translaation alkuvaiheessa, initiaatiossa, aloituskodonin (yleensä metioniinin) tunnistaa ribosomin pieni alayksikkö, johon aminoasyloitu metioniini-tRNA on kiinnittynyt käyttämällä proteiinin aloitustekijöitä . Aloituskodonin tunnistamisen jälkeen suuri alayksikkö liittyy ribosomin pieneen alayksikköön, ja translaation toinen vaihe alkaa - elongaatio. Jokaisessa ribosomin vaiheessa mRNA:n 5'-3'-päästä yksi kodoni luetaan muodostamalla vetysidoksia sen ja siirto-RNA:n komplementaarisen antikodonin välille, johon vastaava aminohappotähde on kiinnittynyt . Peptidisidoksen muodostumista kasvavan peptidin viimeisen aminohappotähteen ja tRNA:han kiinnittyneen aminohappotähteen välille katalysoi ribosomin RNA ( rRNA ), joka muodostaa ribosomin peptidyylitransferaasikeskuksen. Tämä keskus asettaa typpi- ja hiiliatomit reaktiolle suotuisaan asentoon. Kolmas ja viimeinen translaation vaihe, terminaatio, tapahtuu, kun ribosomi saavuttaa lopetuskodonin, minkä jälkeen proteiinin lopetustekijät hydrolysoivat viimeisen tRNA:n ja polypeptidiketjun välisen sidoksen pysäyttäen sen synteesin. Ribosomeissa proteiinit syntetisoidaan aina N-päästä C-päähän [39] .
Ei-ribosomaalinen synteesiAlemmissa sienissä ja joissakin bakteereissa tunnetaan ylimääräinen (ei-ribosomaalinen tai multientsymaattinen) peptidien biosynteesimenetelmä, jonka rakenne on yleensä pieni ja epätavallinen. Näiden peptidien, tavallisesti sekundaaristen metaboliittien , synteesi suorittaa suurimolekyylipainoinen proteiinikompleksi, NRS-syntaasi, ilman ribosomien suoraa osallistumista. NRS-syntaasi koostuu yleensä useista domeeneista tai yksittäisistä proteiineista, jotka valitsevat aminohappoja, muodostavat peptidisidoksen ja vapauttavat syntetisoidun peptidin. Yhdessä nämä verkkotunnukset muodostavat moduulin. Jokainen moduuli varmistaa yhden aminohapon sisällyttämisen syntetisoituun peptidiin. NRS-syntaasit voivat siten koostua yhdestä tai useammasta moduulista. Joskus nämä kompleksit sisältävät domeenin, joka pystyy isomeroimaan L-aminohapot (normaali muoto) D-muotoon [42] [43] .
Lyhyet proteiinit voidaan syntetisoida kemiallisesti käyttämällä orgaanisia synteesimenetelmiä , kuten kemiallista ligaatiota [44] . Useimmiten peptidin kemiallinen synteesi tapahtuu suunnassa C-päästä N-päähän, toisin kuin biosynteesi ribosomeissa. Lyhyet immunogeeniset peptidit ( epitoopit ) saadaan kemiallisella synteesillä, jotka sitten ruiskutetaan eläimiin spesifisten vasta -aineiden tai hybridoomien saamiseksi . Lisäksi tätä menetelmää käytetään myös tiettyjen entsyymien inhibiittoreiden saamiseksi [45] . Kemiallinen synteesi mahdollistaa sellaisten aminohappotähteiden viemisen proteiineihin, joita ei tavallisissa proteiineissa ole, esimerkiksi sellaisia, joiden sivuketjuihin on kiinnitetty fluoresoivia leimoja . Proteiinisynteesin kemiallisilla menetelmillä on useita rajoituksia: ne ovat tehottomia, kun proteiinin pituus on yli 300 aminohappotähdettä, keinotekoisesti syntetisoiduilla proteiineilla voi olla väärä tertiaarinen rakenne, ja niistä puuttuu tyypillisiä translaation jälkeisiä modifikaatioita (katso alla).
Kun translaatio on valmis, useimmat proteiinit käyvät läpi lisäkemiallisia modifikaatioita, joita kutsutaan translaation jälkeisiksi modifikaatioiksi [46] . Yli kaksisataa muunnelmaa proteiinien translaation jälkeisistä modifikaatioista tunnetaan [47] .
Posttranslationaaliset modifikaatiot voivat säädellä proteiinien elinikää solussa, niiden entsymaattista aktiivisuutta ja vuorovaikutuksia muiden proteiinien kanssa. Joissakin tapauksissa translaation jälkeiset modifikaatiot ovat pakollinen vaihe proteiinin kypsymisessä, muuten se osoittautuu toiminnallisesti epäaktiiviseksi. Esimerkiksi insuliinin ja joidenkin muiden hormonien kypsymisen aikana polypeptidiketjun rajoitettu proteolyysi on välttämätön, ja plasmamembraaniproteiinien kypsymisen aikana glykosylaatio on välttämätöntä .
Käännöksen jälkeiset muutokset voivat olla sekä laajalle levinneitä että harvinaisia, jopa ainutlaatuisia. Esimerkki universaalista modifikaatiosta on ubikvitinaatio (lyhyen ubikvitiiniproteiinin useiden molekyylien ketjun proteiiniin kiinnittäminen), joka toimii signaalina tämän proteiinin pilkkoutumisesta proteasomin toimesta [48] . Toinen yleinen muunnos on glykosylaatio – uskotaan, että noin puolet ihmisen proteiineista on glykosyloituneita [49] . Harvinaisia modifikaatioita ovat tyrosinaatio/detyrosinaatio ja tubuliinin polyglysylaatio [50] .
Sama proteiini voi läpikäydä lukuisia modifikaatioita. Siten histonit (proteiinit, jotka muodostavat eukaryoottisen kromatiinin ) voivat eri olosuhteissa käydä läpi yli 150 erilaista modifikaatiota [51] .
Käännöksen jälkeiset muutokset on jaettu:
Eukaryoottisolujen sytoplasmassa syntetisoidut proteiinit on kuljetettava eri soluorganelleihin : ytimeen , mitokondrioihin , endoplasmiseen retikulumiin (ER), Golgin laitteistoon , lysosomeihin jne., ja joidenkin proteiinien on päästävä solunulkoiseen ympäristöön [52] . Päästäkseen tiettyyn solun osaan proteiinilla on oltava erityinen leima. Useimmissa tapauksissa tällainen leima on osa itse proteiinin aminohapposekvenssiä (johtopeptidi tai proteiinin signaalisekvenssi ), mutta joissakin tapauksissa proteiiniin translaation jälkeen kiinnittyneet oligosakkaridit toimivat leimana [53] .
Proteiinien kuljetus ER:hen tapahtuu niiden syntetisoinnissa, koska ribosomit, jotka syntetisoivat proteiineja, joilla on signaalisekvenssi ER:tä varten, "istuvat" erityisille proteiineille sen ulkokalvolla [54] . EPR:stä Golgi-laitteistoon ja sieltä lysosomeihin ja ulkokalvolle tai solunulkoiseen ympäristöön proteiinit kulkeutuvat rakkulakuljetuksella . Proteiinit, joilla on tuman lokalisaatiosignaali, tulevat ytimeen tuman huokosten kautta . Proteiinit, joilla on vastaavat signaalisekvenssit, tulevat mitokondrioihin ja kloroplasteihin spesifisten proteiinitranslokaattorihuokosten kautta chaperonien osallistuessa .
Proteiinien oikean tilarakenteen ylläpitäminen on välttämätöntä niiden normaalille toiminnalle. Proteiinien väärinlaskostuminen, joka johtaa niiden aggregaatioon, voi johtua mutaatioista, hapettumisesta , stressiolosuhteista tai globaaleista solufysiologian muutoksista. Proteiinien aggregoituminen on tyypillinen ikääntymisen merkki . Proteiinin väärinlaskostumisen uskotaan aiheuttavan tai pahentavan sairauksia, kuten kystistä fibroosia , lysosomaalista varastointisairauttasekä neurodegeneratiiviset sairaudet ( Alzheimerin , Huntingtonin ja Parkinsonin taudit ) [55] .
Evoluutioprosessissa solut ovat kehittäneet neljä päämekanismia estämään proteiinien aggregaatiota. Kaksi ensimmäistä - uudelleenlaskostumista (uudelleenlaskostumista) kaperonien avulla ja pilkkomista proteaasien avulla - löytyvät sekä bakteereista että korkeammista organismeista. Autofagia ja väärin laskostuneiden proteiinien kerääntyminen spesifisiin ei-kalvoorganelleihin ovat ominaisia eukaryooteille [26] [56] .
ChaperonesProteiinien kyky palauttaa oikea kolmiulotteinen rakenne denaturoinnin jälkeen mahdollisti hypoteesin, että kaikki tieto proteiinin lopullisesta rakenteesta sisältyy sen aminohapposekvenssiin. Teoria on nykyään yleisesti hyväksytty, että proteiinin stabiililla konformaatiolla on pienin vapaa energia verrattuna tämän polypeptidin muihin mahdollisiin konformaatioihin [57] .
Soluissa on ryhmä proteiineja, joiden tehtävänä on varmistaa muiden proteiinien oikea laskostuminen niiden synteesin jälkeen ribosomissa, proteiinien rakenteen palautuminen niiden vaurioitumisen jälkeen sekä proteiinikompleksien muodostuminen ja dissosiaatio. Näitä proteiineja kutsutaan chaperoneiksi . Monien chaperonien pitoisuus solussa kasvaa ympäristön lämpötilan jyrkän nousun myötä, joten ne kuuluvat Hsp-ryhmään ( lämpösokkiproteiinit ) [ 58] . Chaperonien normaalin toiminnan merkitystä kehon toiminnalle voidaan havainnollistaa esimerkillä α- kristalliinichaperonista , joka on osa ihmisen silmälinssiä . Tämän proteiinin mutaatiot johtavat linssin samenemiseen proteiinien aggregaation vuoksi ja sen seurauksena kaihiin [59] .
ProteolyysiJos proteiinien tertiääristä rakennetta ei voida palauttaa, solu tuhoaa ne. Entsyymejä, jotka hajottavat proteiineja, kutsutaan proteaaseiksi. Substraattimolekyylin hyökkäyspaikan mukaan proteolyyttiset entsyymit jaetaan endopeptidaaseihin ja eksopeptidaaseihin:
Katalyysimekanismin mukaan Kansainvälinen biokemian ja molekyylibiologian liitto erottaa useita proteaasiluokkia, joiden joukossa ovat seriiniproteaasit , asparagiiniproteaasit , kysteiiniproteaasit ja metalloproteaasit [60] .
Erityinen proteaasityyppi on proteasomi , suuri monialayksikköproteaasi, jota esiintyy eukaryoottien , arkkien ja joidenkin bakteerien tumassa ja sytoplasmassa [61] [62] .
Jotta proteasomi pilkkoo kohdeproteiinin, se on merkittävä kiinnittämällä siihen pieni ubikvitiiniproteiini . Ubikitiinilisäysreaktiota katalysoivat entsyymit ubikvitiiniligaasit . Ensimmäisen ubikvitiinimolekyylin kiinnittyminen proteiiniin toimii signaalina ligaaseille kiinnittääkseen ubikvitiinimolekyylejä edelleen. Tämän seurauksena proteiiniin kiinnittyy polyubikitiiniketju, joka sitoutuu proteasomiin ja saa aikaan kohdeproteiinin pilkkomisen [61] [62] . Yleisesti tätä järjestelmää kutsutaan ubikvitiiniriippuvaiseksi proteiinien hajoamiseksi. 80-90 % solunsisäisistä proteiineista hajoaa proteasomin osallistuessa.
Proteiinien hajoaminen peroksisomeissa on tärkeää monille soluprosesseille, mukaan lukien solusykli , geeniekspression säätely ja vaste oksidatiiviseen stressiin .
AutofagiaAutofagia on pitkäikäisten biomolekyylien, erityisesti proteiinien, sekä lysosomien (nisäkkäillä) tai vakuolien (hiivassa) hajoamisprosessi. Autofagia seuraa minkä tahansa normaalin solun elintärkeää toimintaa, mutta ravinteiden puute, vaurioituneiden organellien esiintyminen sytoplasmassa ja lopulta osittain denaturoituneiden proteiinien ja niiden aggregaattien esiintyminen sytoplasmassa voivat toimia kannustimina autofagian prosessien tehostamisessa solut [63] .
Autofagiaa on kolme tyyppiä: mikroautofagia, makroautofagia ja kaperonista riippuvainen autofagia.
Mikroautofagiassa lysosomi ottaa vastaan makromolekyylejä ja solukalvojen fragmentteja. Tällä tavalla solu pystyy sulattamaan proteiineja energian tai rakennusmateriaalin puutteessa (esimerkiksi nälänhädän aikana). Mutta mikroautofagian prosessit tapahtuvat myös normaaleissa olosuhteissa ja ovat yleensä mielivaltaisia. Joskus myös organellit pilkkoutuvat mikroautofagian aikana; Siten peroksisomien mikroautofagiaa ja tumien osittaista mikroautofagiaa, jossa solu säilyy elinkykyisenä, on kuvattu hiivassa [63] .
Makroautofagiassa sytoplasman aluetta (joka sisältää usein joitain organelleja) ympäröi kalvoosasto, joka on samanlainen kuin endoplasmisen retikulumin säiliö. Tämän seurauksena tämä alue erotetaan muusta sytoplasmasta kahdella kalvolla. Näitä kaksikalvoisia organelleja kutsutaan autofagosomeiksi. Autofagosomit fuusioituvat lysosomien kanssa muodostaen autofagolysosomeja, joissa organellit ja muu autofagosomien sisältö pilkotaan. Ilmeisesti makroautofagia on myös epäselektiivinen, vaikka usein korostetaankin, että sen avulla solu pääsee eroon "vanhentuneista" organelleista (mitokondrioista, ribosomeista jne.) [63] .
Kolmas autofagian tyyppi on chaperonista riippuvainen. Tällä menetelmällä tapahtuu osittain denaturoituneiden proteiinien suunnattu kuljetus sytoplasmasta lysosomikalvon läpi sen onteloon, jossa ne pilkkoutuvat. Tämän tyyppinen autofagia, joka on kuvattu vain nisäkkäillä, on stressin aiheuttama [56] .
JUNQ ja IPODStressiolosuhteissa, kun eukaryoottisolu ei pysty selviytymään suuren määrän denaturoituneiden proteiinien kertymisestä, ne voidaan lähettää jompaankumpaan kahdesta tilapäisestä organelleista - JUNQ ja IPOD .[64] .
JUNQ ( JUxta Nuclear Quality Control Compartment ) liittyy tumakalvon ulkopuolelle ja sisältää ubikvitinoituja proteiineja, jotka voivat siirtyä nopeasti sytoplasmaan, sekä kaperoneja ja proteasomeja. JUNQ:n ehdotettu tehtävä on laskostaa uudelleen ja/tai hajottaa proteiineja [26] .
IPOD ( Insoluble Protein Deposit ) sijaitsee lähellä keskusvakuolia ja sisältää liikkumattomia amyloidia muodostavien proteiinien aggregaatteja. Näiden proteiinien kerääntyminen IPODiin voi estää niiden vuorovaikutuksen normaaleiden solurakenteiden kanssa, joten tällä inkluusiolla uskotaan olevan suojaava tehtävä [26] .
Kuten muutkin biologiset makromolekyylit (polysakkaridit, lipidit ja nukleiinihapot), proteiinit ovat kaikkien elävien organismien olennaisia komponentteja ja niillä on tärkeä rooli solujen elämässä. Proteiinit suorittavat aineenvaihduntaprosesseja . Ne ovat osa solunsisäisiä rakenteita - organelleja ja sytoskeletonia , erittyvät solunulkoiseen tilaan, jossa ne voivat toimia solujen välillä välittyvänä signaalina , osallistua ruoan hydrolyysiin ja solujen välisen aineen muodostumiseen .
Proteiinien luokittelu niiden toimintojen mukaan on melko mielivaltaista, koska sama proteiini voi suorittaa useita tehtäviä. Hyvin tutkittu esimerkki tällaisesta monitoiminnallisuudesta on lysyyli-tRNA-syntetaasi, entsyymi aminoasyyli-tRNA-syntetaasien luokkaan , joka ei ainoastaan kiinnitä lysiinitähdettä tRNA :han , vaan säätelee myös useiden geenien transkriptiota [65] . Proteiinit suorittavat monia toimintoja entsymaattisen aktiivisuutensa ansiosta. Joten entsyymejä ovat moottoriproteiini myosiini , proteiinikinaasin säätelyproteiinit , kuljetusproteiini natrium-kalium adenosiinitrifosfataasi jne.
Tunnetuin proteiinien tehtävä kehossa on katalysoida erilaisia kemiallisia reaktioita. Entsyymit ovat proteiineja, joilla on erityisiä katalyyttisiä ominaisuuksia, toisin sanoen jokainen entsyymi katalysoi yhtä tai useampaa samanlaista reaktiota. Entsyymit katalysoivat reaktioita, jotka hajottavat monimutkaisia molekyylejä ( katabolismi ) ja syntetisoivat niitä ( anabolia ), mukaan lukien DNA:n replikaatio ja korjaus sekä RNA-templaattisynteesi. Vuoteen 2013 mennessä on kuvattu yli 5000 entsyymiä [66] [67] . Reaktion kiihtyvyys entsymaattisen katalyysin seurauksena voi olla valtava: esimerkiksi orotidiini-5'-fosfaattidekarboksylaasientsyymin katalysoima reaktio etenee 1017 kertaa nopeammin kuin katalysoimaton ( reaktion puoliaika dekarboksylaatiolle ). oroottihappo on 78 miljoonaa vuotta ilman entsyymiä ja 18 millisekuntia entsyymin mukana) [68] . Molekyylejä, jotka kiinnittyvät entsyymiin ja muuttuvat reaktion seurauksena, kutsutaan substraateiksi .
Vaikka entsyymit koostuvat yleensä sadoista aminohappotähteistä, vain pieni osa niistä on vuorovaikutuksessa substraatin kanssa, ja vielä harvemmat - keskimäärin 3-4 aminohappotähdettä, jotka sijaitsevat usein kaukana toisistaan primäärirakenteessa - ovat suoraan mukana katalyysissä . 69] . Entsyymimolekyylin osaa, joka tarjoaa substraatin sitoutumisen ja katalyysin, kutsutaan aktiiviseksi paikaksi .
Kansainvälinen biokemian ja molekyylibiologian liitto ehdotti vuonna 1992 lopullista versiota entsyymien hierarkkisesta nimikkeistöstä, joka perustuu niiden katalysoimien reaktioiden tyyppiin [70] . Tämän nimikkeistön mukaan entsyymien nimien tulee aina päättyä -ase ja muodostua katalysoitujen reaktioiden ja niiden substraattien nimistä. Jokaiselle entsyymille on määritetty yksilöllinen koodi , jonka avulla on helppo määrittää sen asema entsyymihierarkiassa. Katalysoituneiden reaktioiden tyypin mukaan kaikki entsyymit jaetaan 6 luokkaan:
Sytoskeleton rakenneproteiinit, eräänlaisena armatuurina, antavat muodon soluille ja monille organelleille ja ovat mukana solujen muodon muuttamisessa. Suurin osa rakenneproteiineista on rihmamaisia: aktiini- ja tubuliinimonomeerit ovat esimerkiksi pallomaisia, liukoisia proteiineja, mutta polymeroinnin jälkeen ne muodostavat pitkiä filamentteja, joista muodostuu sytoskeleton, jonka avulla solu säilyttää muotonsa [71] . Kollageeni ja elastiini ovat sidekudoksen (esimerkiksi ruston ) solujen välisen aineen pääkomponentteja , ja hiukset , kynnet , lintujen höyhenet ja jotkut kuoret koostuvat toisesta rakenneproteiinista, keratiinista .
Proteiinien suojaavia toimintoja on useita:
Monia solujen sisällä tapahtuvia prosesseja säätelevät proteiinimolekyylit, jotka eivät toimi solun energialähteenä eivätkä rakennusmateriaalina. Nämä proteiinit säätelevät solun etenemistä solusyklin läpi , transkriptiota , translaatiota , silmukointia , muiden proteiinien aktiivisuutta ja monia muita prosesseja. Proteiinien säätelytoiminto suoritetaan joko entsymaattisen aktiivisuuden (esimerkiksi proteiinikinaasin ) tai spesifisen sitoutumisen vuoksi muihin molekyyleihin. Siten transkriptiotekijät , aktivaattoriproteiinit ja repressoriproteiinit voivat säädellä geenin transkription intensiteettiä sitoutumalla säätelysekvensseihinsä. Translaatiotasolla monien mRNA:iden lukemista säätelee myös proteiinitekijöiden lisääminen [75] .
Tärkein rooli solunsisäisten prosessien säätelyssä on proteiinikinaasit ja proteiinifosfataasit - entsyymit, jotka aktivoivat tai tukahduttavat muiden proteiinien aktiivisuutta kiinnittymällä niihin tai poistamalla fosfaattiryhmiä.
Proteiinien signaalitoiminto on proteiinien kyky toimia signalointiaineina välittäen signaaleja solujen, kudosten, elinten ja organismien välillä. Signalointitoiminto yhdistetään usein säätelytoimintoon, koska monet solunsisäiset säätelyproteiinit suorittavat myös signaalin välitystä.
Signaalitoimintoa suorittavat proteiinit - hormonit , sytokiinit , kasvutekijät jne.
Hormonit kulkeutuvat veressä. Useimmat eläinhormonit ovat proteiineja tai peptidejä. Hormonin sitoutuminen reseptoriinsa on signaali, joka laukaisee soluvasteen. Hormonit säätelevät aineiden pitoisuutta veressä ja soluissa, kasvua, lisääntymistä ja muita prosesseja. Esimerkki tällaisista proteiineista on insuliini , joka säätelee veren glukoosipitoisuutta .
Solut ovat vuorovaikutuksessa toistensa kanssa käyttämällä signaaliproteiineja, jotka välittyvät solujen välisen aineen kautta. Tällaisia proteiineja ovat esimerkiksi sytokiinit ja kasvutekijät.
Sytokiinit ovat peptidisignaalimolekyylejä. Ne säätelevät solujen välisiä vuorovaikutuksia, määrittävät niiden selviytymisen, stimuloivat tai tukahduttavat kasvua, erilaistumista , toiminnallista aktiivisuutta ja apoptoosia , varmistavat immuuni-, hormoni- ja hermostojärjestelmien toiminnan koordinoinnin. Esimerkki sytokiineista on tuumorinekroositekijä , joka välittää tulehdussignaaleja kehon solujen välillä [76] .
Pienmolekyyliseen kuljetukseen osallistuvilla liukoisilla proteiineilla on oltava korkea affiniteetti ( affiniteetti ) substraattiin, kun sitä on läsnä korkeana pitoisuutena, ja ne vapautuvat helposti kohdissa, joissa substraattipitoisuus on alhainen. Esimerkki kuljetusproteiineista on hemoglobiini , joka kuljettaa happea keuhkoista muihin kudoksiin ja hiilidioksidia kudoksista keuhkoihin, sekä sille homologisia proteiineja , joita esiintyy kaikissa elävien organismien valtakunnissa [77] .
Jotkut kalvoproteiinit osallistuvat pienten molekyylien kuljettamiseen solukalvon läpi, mikä muuttaa sen läpäisevyyttä. Kalvon lipidikomponentti on vedenpitävä (hydrofobinen), mikä estää polaaristen tai varautuneiden (ionien) molekyylien diffuusion . Kalvonkuljetusproteiinit luokitellaan yleisesti kanavaproteiineihin ja kantajaproteiineihin. Kanavaproteiinit sisältävät sisäisiä vedellä täytettyjä huokosia, jotka mahdollistavat ionien (ionikanavien kautta) tai vesimolekyylien (akvaporiinien kautta) liikkumisen kalvon läpi. Monet ionikanavat ovat erikoistuneet vain yhden ionin kuljettamiseen; näin ollen kalium- ja natriumkanavat erottavat usein nämä samankaltaiset ionit ja päästävät vain yhden niistä kulkemaan [78] . Kantajaproteiinit sitoutuvat entsyymien tapaan jokaiseen kuljettamaansa molekyyliin tai ioniin, ja toisin kuin kanavat, ne voivat kuljettaa aktiivisesti ATP:n energian avulla. "Solun voimalaitos" - ATP-syntaasi , joka suorittaa ATP:n synteesin protonigradientin ansiosta, voidaan myös katsoa kalvon kuljetusproteiinien ansioksi [79] .
Näitä proteiineja ovat ns. varaproteiinit, jotka varastoituvat energian ja aineen lähteeksi kasvien siemeniin (esim. 7S- ja 11S-globuliinit) ja eläinten muniin [80] . Useita muita proteiineja käytetään kehossa aminohappojen lähteenä, jotka puolestaan ovat biologisesti aktiivisten aineenvaihduntaprosesseja säätelevien aineiden esiasteita .
Proteiinireseptoreita löytyy sekä sytoplasmasta että upotettuna solukalvoon . Yksi osa reseptorimolekyylistä vastaanottaa signaalin , useimmiten kemiallisen aineen, ja joissakin tapauksissa valoa, mekaanista vaikutusta (esimerkiksi venyttelyä) ja muita ärsykkeitä. Kun signaali viedään molekyylin tiettyyn osaan - reseptoriproteiiniin - tapahtuu sen konformaatiomuutoksia . Tämän seurauksena molekyylin toisen osan konformaatio, joka välittää signaalin muille solukomponenteille, muuttuu. Signaalimekanismeja on useita. Jotkut reseptorit katalysoivat tiettyä kemiallista reaktiota; toiset toimivat ionikanavina, jotka avautuvat tai sulkeutuvat, kun signaali syötetään; vielä toiset sitovat spesifisesti solunsisäisiä lähettimolekyylejä. Kalvoreseptoreissa signaalimolekyyliin sitoutuva molekyylin osa sijaitsee solun pinnalla, kun taas signaalia välittävä domeeni on sisällä [81] .
Kokonainen luokka motorisia proteiineja mahdollistaa kehon liikkeen, esimerkiksi lihasten supistumisen, mukaan lukien liikkumisen ( myosiini ), solujen liikkeen kehossa (esimerkiksi leukosyyttien ameboidiliikkeet ), värien ja siimojen liikkeet sekä aktiiviset ja suunnattu solunsisäinen kuljetus ( kinesiini , dyneiini ). Dyneiinit ja kinesiinit kuljettavat molekyylejä mikrotubuluksia pitkin käyttämällä ATP - hydrolyysiä energialähteenä. Dyneiinit kuljettavat molekyylejä ja organelleja solun reunaosista kohti sentrosomia , kinesiinit vastakkaiseen suuntaan [82] [83] . Dyneiinit ovat myös vastuussa värien ja flagellan liikkeestä eukaryooteissa. Myosiinin sytoplasmiset variantit voivat osallistua molekyylien ja organellien kuljettamiseen mikrofilamenttien kautta.
Useimmat mikro -organismit ja kasvit voivat syntetisoida 20 standardiaminohappoa sekä muita ( ei-standardi ) aminohappoja , kuten sitrulliinia . Mutta jos ympäristössä on aminohappoja, jopa mikro-organismit säästävät energiaa kuljettamalla aminohappoja soluihin ja sulkemalla niiden biosynteettiset reitit [84] .
Aminohappoja, joita eläimet eivät pysty syntetisoimaan, kutsutaan välttämättömiksi . Biosynteesireittien tärkeimmät entsyymit , kuten aspartaattikinaasi , joka katalysoi ensimmäistä vaihetta lysiinin , metioniinin ja treoniinin muodostumisessa aspartaatista , puuttuvat eläimistä.
Eläimet saavat aminohapot pääasiassa ravinnonsa proteiineista. Proteiinit hajoavat ruuansulatuksessa , joka yleensä alkaa proteiinin denaturaatiolla asettamalla se happamaan ympäristöön ja hydrolysoimalla se proteaaseiksi kutsutuilla entsyymeillä . Osa ruuansulatuksessa saatavista aminohapoista käytetään kehon proteiinien syntetisoimiseen, kun taas loput muunnetaan glukoosiksi glukoneogeneesin kautta tai niitä käytetään Krebsin syklissä . Proteiinin käyttö energianlähteenä on erityisen tärkeää nälänhädän olosuhteissa, jolloin kehon omat proteiinit, erityisesti lihakset, toimivat energianlähteenä [85] . Aminohapot ovat myös tärkeä typen lähde kehon ravinnossa.
Proteiinien ihmisravinnoksi ei ole olemassa yksittäisiä normeja. Paksusuolen mikrofloora syntetisoi aminohappoja, joita ei oteta huomioon proteiininormeja laadittaessa.
Proteiinien rakennetta ja toimintoja tutkitaan sekä puhdistetuissa valmisteissa in vitro että niiden luonnollisessa ympäristössä elävässä organismissa, in vivo . Puhtaiden proteiinien tutkimukset kontrolloiduissa olosuhteissa ovat hyödyllisiä niiden toimintojen määrittämisessä: entsyymikatalyyttisen aktiivisuuden kinetiikka , suhteellinen affiniteetti eri substraatteihin jne . Proteiinien in vivo -tutkimukset soluissa tai kokonaisissa organismeissa tarjoavat lisätietoa niiden toiminnasta ja niiden säätelystä. heidän toimintansa [86] .
Molekyyli- ja solubiologian menetelmiä käytetään yleensä tutkittaessa proteiinien synteesiä ja lokalisointia solussa. Laajalti käytetty menetelmä lokalisoinnin tutkimiseksi perustuu kimeerisen proteiinin synteesiin solussa , joka koostuu tutkittavasta proteiinista, joka on kytketty "reportteriin", esimerkiksi vihreään fluoresoivaan proteiiniin (GFP) [87] . Tällaisen proteiinin sijainti solussa voidaan nähdä fluoresoivalla mikroskoopilla [88] . Lisäksi proteiinit voidaan visualisoida käyttämällä vasta-aineita, jotka tunnistavat ne, jotka puolestaan sisältävät fluoresoivan leiman. Usein tällaisten organellien, kuten endoplasmisen retikulumin, Golgi-laitteiston, lysosomien ja vakuolien tunnetut proteiinit visualisoidaan samanaikaisesti tutkittavan proteiinin kanssa, mikä mahdollistaa tutkittavan proteiinin sijainnin tarkemman määrittämisen [89] .
Immunohistokemiallisissa menetelmissä käytetään yleensä vasta-aineita, jotka on konjugoitu entsyymeihin, jotka katalysoivat luminoivan tai värillisen tuotteen muodostumista, mikä mahdollistaa tutkittavan proteiinin sijainnin ja määrän vertailemisen näytteissä. Harvinaisempi menetelmä proteiinien sijainnin määrittämiseksi on solufraktioiden tasapaino- ultrasentrifugointi sakkaroosi- tai cesiumkloridigradientissa [90] [91] .
Lopuksi yksi klassisista menetelmistä on immunoelektronimikroskooppi , joka on pohjimmiltaan samanlainen kuin immunofluoresenssimikroskopia sillä erolla, että käytetään elektronimikroskooppia. Näyte valmistetaan elektronimikroskopiaa varten ja käsitellään sitten proteiinin vasta-aineilla, jotka on kytketty elektronitiheään materiaaliin, yleensä kultaan [92] .
Kohdennettua mutageneesiä käyttämällä tutkijat voivat muuttaa proteiinin aminohapposekvenssiä ja siten sen spatiaalista rakennetta, sijaintia solussa ja sen aktiivisuuden säätelyä. Tällä menetelmällä, käyttämällä modifioituja tRNA:ita [93] , on myös mahdollista viedä proteiiniin keinotekoisia aminohappoja ja konstruoida proteiineja, joilla on uusia ominaisuuksia [94] .
In vitro -määrityksen suorittamiseksi proteiini on puhdistettava muista solukomponenteista. Tämä prosessi alkaa yleensä solujen tuhoutumisesta ja niin sanotun soluuutteen tuottamisesta . Lisäksi sentrifugoimalla ja ultrasentrifugoimalla tämä uute voidaan jakaa: fraktioon, joka sisältää liukoisia proteiineja; kalvolipidejä ja proteiineja sisältävä fraktio; ja fraktio, joka sisältää soluorganelleja ja nukleiinihappoja.
Proteiinisaostusta suolaamalla käytetään proteiiniseosten erottamiseen, ja se mahdollistaa myös proteiinien tiivistämisen . Sedimentaatioanalyysi ( sentrifugointi ) mahdollistaa proteiiniseosten fraktioinnin yksittäisten proteiinien sedimentaatiovakion arvon mukaan mitattuna swedbergeinä (S) [95] . Eri tyyppisiä kromatografioita käytetään sitten halutun proteiinin tai proteiinien eristämiseen ominaisuuksien, kuten molekyylipainon , varauksen ja affiniteetin, perusteella [96] [97] . Lisäksi proteiineja voidaan eristää varauksensa mukaan käyttämällä sähköfokusointia [98] .
Proteiinien puhdistusprosessin yksinkertaistamiseksi käytetään usein geenitekniikkaa , jonka avulla voidaan luoda proteiinijohdannaisia, jotka on helppo puhdistaa vaikuttamatta niiden rakenteisiin tai toimintaan. "Leimat", jotka ovat pieniä aminohapposekvenssejä, kuten 6 tai useamman histidiinitähteen ketju , ja jotka on kiinnitetty proteiinin toiseen päähän. Kun "leimatun" proteiinin syntetisoineiden solujen uute johdetaan nikkeli-ioneja sisältävän kromatografiakolonnin läpi, histidiini sitoutuu nikkeliin ja jää pylvääseen, kun taas lysaatin muut komponentit kulkevat esteettömästi kolonnin läpi (nikkelikelaattikromatografia ). Lukuisia muita leimoja on kehitetty auttamaan tutkijoita eristämään spesifisiä proteiineja monimutkaisista seoksista, yleisimmin affiniteettikromatografialla [99] .
Proteiinin puhdistusaste voidaan määrittää, jos sen molekyylipaino ja isoelektrinen piste tunnetaan - käyttämällä erilaisia geelielektroforeesityyppejä - tai mittaamalla entsymaattista aktiivisuutta, jos proteiini on entsyymi. Massaspektrometria mahdollistaa eristetyn proteiinin tunnistamisen sen molekyylipainon ja fragmenttien massan perusteella [100] .
Näytteen proteiinimäärän määrittämiseen käytetään useita menetelmiä [101] : biureettimenetelmä , mikrobiureettimenetelmä , Bradfordin menetelmä , Lowryn menetelmä , spektrofotometrinen menetelmä .
Soluproteiinien kokonaisuutta kutsutaan proteomiksi , sen tutkimusta kutsutaan proteomiikaksi , joka on nimetty analogisesti genomiikan kanssa . Proteomiikan tärkeimpiä kokeellisia menetelmiä ovat:
Kaikkien solussa olevien proteiinien biologisesti merkittävien vuorovaikutusten kokonaisuutta kutsutaan vuorovaikutukseksi [106] . Kaikkia mahdollisia tertiäärisiä rakenteita edustavien proteiinien rakenteen systemaattista tutkimusta kutsutaan rakennegenomiikaksi [107] .
Tilarakenteen ennustaminen tietokoneohjelmilla ( in silico ) mahdollistaa mallien rakentamisen proteiineista, joiden rakennetta ei ole vielä kokeellisesti määritetty [108] . Menestynein rakenteen ennustamisen tyyppi, joka tunnetaan nimellä homologiamallinnus , perustuu olemassa olevaan "templaatti"-rakenteeseen, joka on samanlainen aminohapposekvenssiltään kuin mallinnettava proteiini [109] . Proteiinien geenitekniikan nousevalla alalla on käytössä menetelmiä proteiinien spatiaalisen rakenteen ennustamiseen , joiden avulla on jo saatu uusia proteiinien tertiäärisiä rakenteita [110] . Vaikeampi laskennallinen haaste on molekyylien välisten vuorovaikutusten, kuten molekyylien telakoitumisen , ennustaminen ja proteiini-proteiini-vuorovaikutusten ennustaminen [111] .
Proteiinien laskostumista ja molekyylien välisiä vuorovaikutuksia voidaan mallintaa käyttämällä molekyylimekaniikkaa, erityisesti molekyylidynamiikka ja Monte Carlo -menetelmä , jotka hyödyntävät yhä enemmän rinnakkais- ja hajautettua laskentaa (esimerkiksi Folding@home-projekti [112] ). Pienten α-kierteisten proteiinidomeenien, kuten villiiniproteiinin [113] tai jonkin HIV -proteiinin [114] laskostumista on mallinnettu menestyksekkäästi in silico . Visuaalisen pigmentin rodopsiinin elektronisia tiloja tutkittiin hybridimenetelmillä, joissa yhdistettiin standardi molekyylidynamiikka kvanttimekaniikkaan [115] .
Temaattiset sivustot | ||||
---|---|---|---|---|
Sanakirjat ja tietosanakirjat |
| |||
|
Biokemiallisten molekyylien pääryhmät | |
---|---|